2.43
1.65
1.98
0.73
1.88
1.81
2.43
2.2 상대 분자량 분포의 검정 곡선에 사용된 표준 물질: 인슐린, 미코펩타이드, 글리신-글리신-티로신-아르기닌, 글리신-글리신-글리신
3. 기기 및 장비
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
전반적으로 수스타 제품의 아미노산 함량 비율이 진프로 제품보다 높습니다.
제8부 사용의 효과
산란기 후반 산란계의 생산 성능 및 계란 품질에 미치는 미량 무기질 공급원의 차이에 대한 연구
생산 공정
표적 킬레이션 기술
전단 유화 기술
압력 분무 및 건조 기술
냉동 및 제습 기술
첨단 환경 제어 기술
부록 A: 펩타이드의 상대 분자량 분포 측정 방법
채택된 표준: GB/T 22492-2008
1. 테스트 원칙:
고성능 겔 여과 크로마토그래피(HPLC)를 이용하여 분석하였다. 즉, 다공성 충전제를 고정상으로 사용하고, 시료 성분들의 상대 분자량 차이를 이용하여 분리한 후, 220nm의 자외선 흡수 파장에서 펩타이드 결합을 검출하였다. 겔 여과 크로마토그래피를 이용한 상대 분자량 분포 분석 전용 소프트웨어(GPC 소프트웨어)를 사용하여 크로마토그램과 그 데이터를 처리하고 계산하여 대두 펩타이드의 상대 분자량과 분포 범위를 구하였다.
2. 시약
실험에 사용되는 물은 GB/T6682의 재활용수 규격을 충족해야 하며, 특별한 규정이 있는 경우를 제외하고 사용되는 시약은 분석용 순도의 것이어야 합니다.
2.1 시약에는 아세토니트릴(크로마토그래피적으로 순수한 것), 트라이플루오로아세트산(크로마토그래피적으로 순수한 것)이 포함됩니다.
2.2 상대 분자량 분포의 검정 곡선에 사용된 표준 물질: 인슐린, 미코펩타이드, 글리신-글리신-티로신-아르기닌, 글리신-글리신-글리신
3. 기기 및 장비
3.1 고성능 액체 크로마토그래프(HPLC): UV 검출기와 GPC 데이터 처리 소프트웨어가 장착된 크로마토그래피 워크스테이션 또는 적분기.
3.2 이동상 진공 여과 및 탈기 장치.
3.3 전자저울: 눈금값 0.000 1g.
4가지 작동 단계
4.1 크로마토그래피 조건 및 시스템 적응 실험(참고 조건)
- 4.1.1 크로마토그래피 컬럼: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (내경) 또는 단백질 및 펩타이드 측정에 적합한 유사한 성능을 가진 동일 유형의 기타 겔 컬럼.
- 4.1.2 이동상: 아세토니트릴 + 물 + 트라이플루오로아세트산 = 20 + 80 + 0.1.
- 4.1.3 검출 파장: 220 nm.
- 4.1.4 유량: 0.5 mL/min.
- 4.1.5 감지 시간: 30분
- 4.1.6 시료 주입량: 20μL.
- 4.1.7 컬럼 온도: 실온.
- 4.1.8 크로마토그래피 시스템이 검출 요구 사항을 충족하도록 하기 위해, 상기 크로마토그래피 조건 하에서 겔 크로마토그래피 컬럼 효율, 즉 이론 단수(N)는 트리펩타이드 표준물질(글리신-글리신-글리신)의 피크를 기준으로 계산했을 때 10,000 이상이어야 한다고 규정하였다.
- 4.2 상대 분자량 표준 곡선 작성
- 상기 다양한 상대 분자량을 갖는 펩타이드 표준 용액(질량 농도 1 mg/mL)은 이동상 매칭을 통해 제조하고, 일정 비율로 혼합한 후, 기공 크기가 0.2 μm~0.5 μm인 유기상 멤브레인으로 여과하여 시료에 주입하고, 표준 용액의 크로마토그램을 얻었다. 상대 분자량의 로그값을 유지 시간에 대해 플롯하거나 선형 회귀 분석을 통해 상대 분자량 검량 곡선과 그 방정식을 구하였다.
4.3 시료 처리
10mL 부피 플라스크에 시료 10mg을 정확하게 칭량하고 이동상을 약간 첨가한 후, 시료가 완전히 용해되고 혼합되도록 10분간 초음파 진탕하고, 이동상으로 눈금까지 희석한 다음, 기공 크기가 0.2μm~0.5μm인 유기상 멤브레인을 통해 여과하고, 여과액을 A.4.1의 크로마토그래피 조건에 따라 분석하였다.
- 5. 상대 분자량 분포 계산
- 4.3에서 제조한 시료 용액을 4.1의 크로마토그래피 조건에서 분석한 후, GPC 데이터 처리 소프트웨어를 이용하여 시료의 크로마토그래피 데이터를 검정 곡선 4.2에 대입하면 시료의 상대 분자량과 분포 범위를 얻을 수 있다. 다양한 펩타이드의 상대 분자량 분포는 피크 면적 정규화 방법을 이용하여 다음 공식에 따라 계산할 수 있다: X=A/A(총합)×100
- 공식에서: X - 시료 내 전체 펩타이드 중 상대 분자량 펩타이드의 질량 분율(%);
- A - 상대 분자량 펩타이드의 피크 면적;
- 총 A - 각 상대 분자량 펩타이드의 피크 면적의 합으로, 소수점 첫째 자리까지 계산됩니다.
- 6. 반복성
- 반복성 조건에서 얻은 두 번의 독립적인 측정값 사이의 절대 차이는 두 측정값의 산술 평균의 15%를 초과해서는 안 됩니다.
- 부록 B: 유리 아미노산 측정 방법
- 표준 채택: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 시약 및 재료
- 빙초산: 분석용 순수산
- 과염소산: 0.0500 mol/L
- 지시약: 0.1% 크리스탈 바이올렛 지시약(빙초산)
- 2. 유리 아미노산 측정
시료를 80°C에서 1시간 동안 건조시켰다.
시료를 건조한 용기에 담아 자연적으로 실온이 될 때까지 식히거나, 사용 가능한 온도까지 식히십시오.약 0.1g의 시료(정확도 0.001g)를 250mL 건조 삼각 플라스크에 넣습니다.시료가 주변 습기를 흡수하는 것을 방지하기 위해 신속하게 다음 단계로 진행하십시오.빙초산 25mL를 넣고 5분 이내로 잘 섞어주세요.크리스탈 바이올렛 지시약 2방울을 넣으세요.0.0500 mol/L(±0.001) 과염소산 표준 적정 용액으로 용액의 색이 보라색에서 종말점으로 변할 때까지 적정한다.
소모된 표준 용액의 부피를 기록하십시오.
- 동시에 공시험도 실시하십시오.
- 3. 계산 및 결과
- 시약 내 유리 아미노산 함량 X는 질량 분율(%)로 표시되며 다음 공식에 따라 계산됩니다: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%,
- C - 표준 과염소산 용액의 농도(몰/리터, mol/L)
- V1 - 표준 과염소산 용액으로 시료를 적정하는 데 사용된 부피(밀리리터(mL)).
- Vo - 표준 과염소산 용액을 사용한 적정 블랭크의 부피(밀리리터(mL))
M - 시료의 질량(그램, g).
| 0.1445: 표준 과염소산 용액 1.00mL에 해당하는 아미노산의 평균 질량[c(HClO4) = 1.000mol/L]. | 4.2.3 황산세륨 표준 적정 용액: 농도 c [Ce(SO4)2] = 0.1 mol/L, GB/T601에 따라 제조됨. | |
| 표준 채택: Q/70920556 71-2024 | 1. 결정 원리 (철을 예로 들어 설명) | 아미노산-철 착물은 무수 에탄올에 용해도가 매우 낮지만, 유리 금속 이온은 무수 에탄올에 용해됩니다. 이 둘의 무수 에탄올에서의 용해도 차이를 이용하여 아미노산-철 착물의 킬레이션 속도를 결정했습니다. |
| 공식에서: V1 - 시험 용액 적정에 사용된 황산세륨 표준 용액의 부피(mL); | 무수 에탄올; 나머지는 GB/T 27983-2011의 4.5.2항과 동일합니다. | 3. 분석 단계 |
| 두 번의 실험을 동시에 진행한다. 103±2℃에서 1시간 동안 건조시킨 시료 0.1g을 0.0001g의 정확도로 칭량하고, 무수 에탄올 100mL를 첨가하여 용해시킨 후 여과한다. 여과 잔류물을 무수 에탄올 100mL로 최소 3회 세척한 후, 잔류물을 250mL 삼각 플라스크에 옮기고, GB/T27983-2011 제4.5.3항에 따라 황산 용액 10mL를 첨가한다. 그 후, GB/T27983-2011 제4.5.3항 "가열하여 용해시킨 후 냉각"에 따라 다음 단계를 수행한다. 동시에 공시험도 실시한다. | 4. 총 철분 함량 측정 | 4.1 결정 원칙은 GB/T 21996-2008의 4.4.1항과 동일합니다. |
4.2. 시약 및 용액
| 4.2.1 혼합산: 황산 150mL와 인산 150mL를 물 700mL에 넣고 잘 섞는다. | 4.2.2 디페닐아민술폰산나트륨 지시약 용액: 5g/L, GB/T603에 따라 제조. | 4.2.3 황산세륨 표준 적정 용액: 농도 c [Ce(SO4)2] = 0.1 mol/L, GB/T601에 따라 제조됨. | |
| 4.3 분석 단계 | 두 번의 실험을 동시에 진행한다. 시료 0.1g을 0.20001g 단위까지 정확하게 칭량하여 250mL 삼각 플라스크에 넣고 혼합산 10mL를 첨가하여 용해시킨 후, 물 30mL와 디아닐린술폰산나트륨 지시약 용액 4방울을 첨가한다. 그 후 GB/T21996-2008 규격 4.4.2항에 따라 다음 단계를 수행한다. 동시에 공시험도 실시한다. | 4.4 결과 표현 | 아미노산 철 복합체의 총 철 함량 X1은 철의 질량 분율로 나타낸 값(%)으로 공식 (1)에 따라 계산되었습니다. |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - 공백 용액 적정에 사용된 황산세륨 표준 용액의 양(mL); | V0 - 공백 용액 적정에 사용된 황산세륨 표준 용액의 양(mL); | C - 황산세륨 표준 용액의 실제 농도(mol/L)5. 킬레이트 화합물 내 철 함량 계산킬레이트 내 철 함량 X2는 질량 분율(%)로 표시되며 다음 공식에 따라 계산되었습니다: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100 |
| 공식에서: V1 - 시험 용액 적정에 사용된 황산세륨 표준 용액의 부피(mL); | V2 - 공백 용액 적정에 사용된 황산세륨 표준 용액의 양(mL);nom1은 시료의 질량(g)입니다. 병렬 측정 결과의 산술 평균을 측정 결과로 사용하고, 병렬 측정 결과의 절대 차이는 0.3% 이하입니다. | 0.05585 - 1.00mL의 황산세륨 표준 용액 C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L에 해당하는 2가 철의 질량(그램)입니다.nom1은 시료의 질량(g)입니다. 병렬 측정 결과의 산술 평균을 측정 결과로 사용하고, 병렬 측정 결과의 절대 차이는 0.3% 이하입니다. | 6. 킬레이션 속도 계산킬레이션율 X3(%)은 X3 = X2/X1 × 100으로 표시됩니다.부록 C: 진프로의 킬레이션 속도 측정 방법 |
표준 채택: Q/320205 KAVNO7-2016
1. 시약 및 재료
a) 빙초산: 분석용 순수; b) 과염소산: 0.0500mol/L; c) 지시약: 0.1% 크리스탈 바이올렛 지시약(빙초산)
2. 유리 아미노산 측정
2.1 시료를 80°C에서 1시간 동안 건조시켰다.
2.2 시료를 건조한 용기에 담아 자연적으로 실온까지 식히거나 사용 가능한 온도까지 식히십시오.
2.3 약 0.1g의 시료(정확도 0.001g)를 250mL 건조 원뿔형 플라스크에 넣습니다.
2.4 시료가 주변 습기를 흡수하는 것을 방지하기 위해 신속하게 다음 단계로 진행하십시오.
2.5 빙초산 25mL를 넣고 5분 이내로 잘 섞어줍니다.
2.6 크리스탈 바이올렛 지시약 2방울을 넣으세요.
2.7 0.0500mol/L(±0.001) 과염소산 표준 적정 용액으로 용액의 색이 보라색에서 녹색으로 변하는 동안 15초간 색 변화가 없는 것이 종말점인 시점까지 적정한다.
2.8 소모된 표준 용액의 부피를 기록하십시오.
2.9 동시에 공백 테스트도 실시하십시오.
- 3. 계산 및 결과
- 카탈로니아 사람
- Physicochemical parameters
V1 - 표준 과염소산 용액으로 시료를 적정하는 데 사용된 부피(밀리리터(mL)).
Vo - 표준 과염소산 용액을 사용한 적정 블랭크의 부피(밀리리터(mL))
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
주소: 중국 쓰촨성 청두시 푸장현 서우안진 칭푸로 147번지
전화번호: 86-18880477902
제품
무기 미량 미네랄
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| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
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| Bird | 중국인 | 프랑스 국민 | 독일 사람 스페인 사람 |
| Aquatic animals | 일본어 | 한국인 | 아라비아 말 그리스 사람 |
| 터키어 | 이탈리아 사람 | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | 인도네시아 인 아프리카 어 스웨덴어 |
광택
- 바스크 사람
- 카탈로니아 사람
- Physicochemical parameters
힌디 어
라오스
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
쇼나
불가리아 사람
- 세부아노
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- 크로아티아어
네덜란드 사람
| Application object | 우르두어 베트남 사람 | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| 구자라트어 | 아이티 섬 사람 | 하우사어 | 키냐르완다 몽족 헝가리 인 |
| Piglets and fattening pigs | 이그보 | 자바어 | 칸나다어 크메르 쿠르드족 |
| 키르기스 | 라틴어 | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | 마케도니아 어 말레이 사람 말라얄람어 |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
노르웨이 인
- 파슈토어
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
세르비아 사람
세소토어
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
쇼나
신디
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
스와힐리어
타지크어
타밀 사람
텔루구어
태국
| Application object | 우르두어 베트남 사람 | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| 이디시어 | 요루바족 | 줄루 족 | 키냐르완다 오리야 투르크멘 말 |
| 위구르족 | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
